摘要： 以張掖龍渠青海云杉(Picea crassifolia)無(wú)性系種子園中的106個(gè)青海云杉親本無(wú)性系為研究材料,采用改良CTAB法,提取的青海云杉基因組DNA,構(gòu)建SLAF文庫(kù)并進(jìn)行高通量測(cè)序,之后分析SLAF測(cè)序數(shù)據(jù)和篩選SNP位點(diǎn),基于鄰接法分析得到樣品的聚類情況。研究得出:將測(cè)序的水稻日本晴reads與其參考基因組進(jìn)行比對(duì),顯示本試驗(yàn)雙端比對(duì)效率為95.33%,說(shuō)明SLAF建庫(kù)成功。本研究中所測(cè)序列的Q30較高,堿基測(cè)序錯(cuò)誤率低,測(cè)序質(zhì)量高;本研究共開(kāi)發(fā)4058883個(gè)SLAF標(biāo)簽,標(biāo)簽的平均測(cè)序深度為21.21×。共開(kāi)發(fā)12275765個(gè)青海云杉SNP標(biāo)記,各青海云杉樣本的SNP數(shù)量為1890934~4487841。利用已開(kāi)發(fā)的高質(zhì)量青海云杉SNP標(biāo)記,構(gòu)建了106個(gè)青海云杉的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),發(fā)現(xiàn)來(lái)自不同種源的青海云杉在各組中分布比較均勻,不同種源的青海云杉多聚為一類。通過(guò)SNP標(biāo)記和主成分分析,這些無(wú)性系來(lái)源于同一個(gè)祖先的可能性較大,表明無(wú)性系間親緣關(guān)系相近。為今后遺傳多樣性的分析、遺傳圖譜的構(gòu)建等提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù),也為青海云杉初級(jí)種子園去劣疏伐提供依據(jù),為高世代種子園的營(yíng)建奠定基礎(chǔ)。

摘要： 目的:基于多重聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)技術(shù),建立并評(píng)價(jià)一種可同時(shí)快速特異鑒別熊膽粉生物來(lái)源的方法,為鑒別人工模擬混合摻假樣品提供依據(jù)。方法:利用豬、牛和熊線粒體細(xì)胞色素b基因,SDS-蛋白酶K裂解法(SDS-PK)提取膽類DNA,Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)可擴(kuò)增不同大小DNA片段且無(wú)交叉反應(yīng)的物種特異性引物,特異性擴(kuò)增后,將擴(kuò)增條帶克隆后測(cè)序,與GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)已登記序列比對(duì)。建立并優(yōu)化多重PCR,評(píng)價(jià)其特異性和靈敏度,并采用該方法鑒別27份模擬混合摻假樣品。結(jié)果:建立的豬、牛和熊膽粉DNA提取方法可于2 h之內(nèi)完成操作,DNA純度分別為2.04、1.69和1.70,濃度分別為158.63、189.34和148.55 mg·L^(-1)。設(shè)計(jì)可擴(kuò)增出豬、牛和熊的物種特異性引物。測(cè)序結(jié)果與GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)已登記序列同源性達(dá)99%以上。PCR體系各物種引物特異性強(qiáng),無(wú)非特異擴(kuò)增。應(yīng)用于三重PCR體系中的引物互不干擾,檢測(cè)靈敏度高,3種靶標(biāo)樣品任意一種DNA濃度降至1 mg·L^(-1)時(shí)均可成功檢測(cè)。27份人工模擬熊膽粉不同物種及不同比例摻假樣品的檢測(cè)結(jié)果與預(yù)設(shè)混合情況相符,盲法隨機(jī)抽樣重復(fù)檢測(cè)5次,結(jié)果穩(wěn)定。結(jié)論:成功建立可通過(guò)一次實(shí)驗(yàn)同時(shí)鑒別豬、牛和熊膽粉的方法,具有簡(jiǎn)便、靈敏及高效的特點(diǎn),可應(yīng)用于熊膽粉及其常見(jiàn)動(dòng)物源性摻偽的鑒別。

摘要： 分析教材中"DNA的粗提取與鑒定"實(shí)驗(yàn)存在的不足,探索如何在山區(qū)縣域?qū)W校,用新的實(shí)驗(yàn)材料和方法提高實(shí)驗(yàn)效率,縮短實(shí)驗(yàn)時(shí)間,從而達(dá)到良好的實(shí)驗(yàn)效果,提高學(xué)生的參與度,幫助學(xué)生深刻理解相關(guān)生物學(xué)知識(shí).

摘要： 獲得高質(zhì)量的微生物基因組DNA是進(jìn)行復(fù)雜微生物群落宏基因組學(xué)研究的基礎(chǔ)和難點(diǎn)。植物葉表是一個(gè)微生物多樣性豐富的復(fù)雜生態(tài)系統(tǒng),這些微生物群落可以調(diào)節(jié)葉片功能性狀,影響植物的適應(yīng)性。深入了解葉表微生物群落的基本結(jié)構(gòu)和功能原理,有助于在促進(jìn)植物生長(zhǎng)和植物保護(hù)方面發(fā)揮重要的應(yīng)用價(jià)值。由于葉表嚴(yán)苛的環(huán)境,導(dǎo)致富集葉表微生物難度較大,嚴(yán)重限制了高質(zhì)量葉表微生物基因組DNA的提取?；诂F(xiàn)有DNA提取方法,加入表面活性劑Silwet L-77進(jìn)行前處理,同時(shí)循環(huán)利用洗脫液,加強(qiáng)葉表微生物的富集,以提高葉表微生物的獲取量。結(jié)合商業(yè)試劑盒方法進(jìn)行提取得到高純度、高濃度的基因組DNA。經(jīng)過(guò)質(zhì)量控制和建庫(kù)測(cè)序驗(yàn)證,DNA質(zhì)量達(dá)到宏基組建庫(kù)的要求。通過(guò)此方法可以提高葉表微生物分離和收集效率的方法,提高葉表微生物DNA提取成功率,為應(yīng)用高通量測(cè)序技術(shù)研究葉表微生物組成和其他植物分子生物學(xué)研究提供參考。

摘要： 目的檢驗(yàn)玻璃珠-渦旋振蕩改良法提升硅藻DNA提取的效果。方法以DNeasyPowerSoilPro試劑盒為對(duì)照,另選取2種不同原理的植物DNA提取試劑盒(新型植物基因組DNA提取試劑盒、PlantDNA Isolation試劑盒)和1種血液DNA提取試劑盒(全血基因組DNA提取試劑盒)對(duì)同一水樣及同一溺死案件肺組織的硅藻DNA進(jìn)行提取。設(shè)計(jì)不同大小玻璃珠質(zhì)量比和渦旋振蕩時(shí)間的組合,選擇加入玻璃珠振蕩的最佳DNA提取條件。將常規(guī)組與改良組的提取產(chǎn)物直接進(jìn)行電泳,經(jīng)硅藻特異性PCR擴(kuò)增檢測(cè),采用qPCR對(duì)提取物進(jìn)行定量,對(duì)各組的Ct值進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。結(jié)果當(dāng)渦旋振蕩頻率為3000r/min時(shí),DNA提取的最佳組合為渦旋振蕩4 min,大小玻璃珠質(zhì)量比為1∶1。以DNeasyPowerSoilPro試劑盒的Ct值為參照,10 mL水樣的Ct值大于0.5g組織的Ct值。其他3種試劑盒采用玻璃珠-渦旋振蕩改良法后,用于植物DNA提取的2種試劑盒Ct值均下降,且改良前后組織的Ct值差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);全血基因組DNA提取試劑盒可以成功提取硅藻DNA,水樣提取效果接近DNeasyPowerSoilPro試劑盒,改良法用于組織樣本后,其Ct值差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);但應(yīng)用3種試劑盒對(duì)水樣中硅藻DNA進(jìn)行提取時(shí),改良前后的Ct值只有新型植物基因組DNA提取試劑盒差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論玻璃珠-渦旋振蕩改良法可提高植物及血液DNA提取試劑盒對(duì)法醫(yī)學(xué)檢材中硅藻DNA的提取效果,特別是對(duì)組織樣本中硅藻DNA的提取。

摘要： 近年來(lái)基于培養(yǎng)和非培養(yǎng)方法研究油藏微生物的報(bào)道已經(jīng)不少,但鮮有基因組總DNA提取技術(shù)與微生物檢出性的報(bào)道。文章通過(guò)對(duì)長(zhǎng)慶油田Q2YG138140油井采出液進(jìn)行現(xiàn)場(chǎng)分類分級(jí)處理,將原樣本即時(shí)分為油相及水相(分成4種孔徑(10.00,1.00,0.22,0.10μm)膜濾)作為研究對(duì)象,結(jié)合自主原油基因組總DNA提取技術(shù)對(duì)該油井采出液樣本進(jìn)行菌群分析。結(jié)果表明:油相樣本共檢出11門(mén)、25綱、43目、66科和78屬,水相樣本共檢出17門(mén)、35綱、64目、105科和150屬。該自主提取方法對(duì)油藏常見(jiàn)多種菌門(mén)及菌屬基因組DNA的提取均具有較好的適用性。油相中,檢出11屬為“其它”,相對(duì)豐度10.02%;水相中,檢出26屬為“其它”,相對(duì)豐度17.34%,6屬為未分類,相對(duì)豐度0.40%,該方法針對(duì)未知微生物和生物量相對(duì)較低的極端環(huán)境微生物仍均具有一定的檢出能力。4種濾膜(10.00,1.00,0.22,0.10μm)分別檢出10門(mén)、8門(mén)、10門(mén)和13門(mén),59屬、65屬、79屬和82屬。0.10μm濾膜檢出的菌群多樣性明顯多,進(jìn)一步表明該自主提取方法適用于油水微生物的多樣性分析。

摘要： 甲醛溶液浸泡的人類組織樣本很多情況下是可遇不可求的珍貴資源,而其DNA的提取是一大難題。本文分別使用改進(jìn)的甲醛溶液浸泡樣本基因組DNA提取方法以及通用型基因組DNA提取試劑盒,對(duì)四份不同時(shí)間固定的福爾馬林浸泡的人類胚胎皮膚和肌肉的樣本進(jìn)行基因組DNA提取。使用紫外分光光度計(jì)鑒定所提取DNA的純度和質(zhì)量濃度,DNA溶液點(diǎn)樣進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳及成像,結(jié)果顯示,改進(jìn)的提取方法所得基因組DNA的質(zhì)量濃度和純度均優(yōu)于通用型基因組DNA提取方法。以提取所得的基因組DNA模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,電泳結(jié)果顯示,改進(jìn)的提取方法所提取的基因組DNA有更好的PCR擴(kuò)增效果。本研究為甲醛溶液浸泡的珍貴樣本的基因組DNA的提取提供了方法指導(dǎo)和改進(jìn)方向的參考。

摘要： 為獲得一種能高效穩(wěn)定提取玉林大蒜基因組DNA的方法,以便于進(jìn)行其分子生物學(xué)鑒定,本研究使用十六烷基三甲基溴化胺(CTAB)法、十二烷基硫酸鈉(SDS)法、尿素法、試劑盒法和高鹽低p H法對(duì)大蒜鱗莖進(jìn)行DNA提取,通過(guò)純度和濃度、瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),來(lái)判斷不同方法所提取的大蒜DNA的質(zhì)量。結(jié)果表明:用尿素法提取可以有效除去大蒜中多酚類和多糖類等物質(zhì)的干擾,提取大蒜的DNA濃度高,效果理想。

摘要： 建立一種恒溫隔絕式聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(insulated isothermal polymerase chain reaction,iiPCR)檢測(cè)食品中金黃色葡萄球菌的方法。根據(jù)nuc基因設(shè)計(jì)特異性引物、探針,并探索針對(duì)食品樣品快速提取金黃色葡萄球菌模板DNA的方法;通過(guò)優(yōu)化引物、探針及模板的用量,對(duì)iiPCR的特異性、靈敏度、穩(wěn)定性進(jìn)行評(píng)價(jià),并利用該方法和傳統(tǒng)PCR方法對(duì)人工污染樣品和實(shí)際采集食品樣品中的金黃色葡萄球菌進(jìn)行檢測(cè)和比較。結(jié)果表明:水浴法因操作簡(jiǎn)便、耗時(shí)短、儀器要求不高,適合快速提取模板DNA;建立的iiPCR具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、穩(wěn)定性好的特點(diǎn),且與其他菌無(wú)交叉反應(yīng);對(duì)人工污染豬肉樣品和牛奶樣品中的金黃色葡萄球菌,iiPCR方法可在培養(yǎng)至第6小時(shí)完成檢測(cè),檢出限為10^(3) CFU/mL和10^(2) CFU/mL,傳統(tǒng)PCR方法8 h后完成檢測(cè),檢出限為10^(5) CFU/mL;針對(duì)實(shí)際采集的食物樣品,驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)表明iiPCR方法在培養(yǎng)至第6小時(shí)的檢出結(jié)果與傳統(tǒng)PCR在培養(yǎng)至第12小時(shí)以及傳統(tǒng)培養(yǎng)方法培養(yǎng)至第16小時(shí)的檢出結(jié)果一致。證明建立的iiPCR方法能夠更快速準(zhǔn)確檢測(cè)食品中金黃色葡萄球菌。

摘要： 飼料樣本本身的復(fù)雜性給進(jìn)出口產(chǎn)品轉(zhuǎn)基因(genetically modified,GM)成分的檢測(cè)工作帶來(lái)了巨大的壓力和挑戰(zhàn)。玉米蛋白粉主要包含蛋白質(zhì)、淀粉和脂類等成分,從中提取高品質(zhì)的DNA比較困難,而高品質(zhì)的DNA是轉(zhuǎn)基因檢測(cè)研究的關(guān)鍵,能夠大大降低進(jìn)出口檢驗(yàn)中的“假陰性”結(jié)果。采用市售主流品牌常用的7種試劑盒(Promega公司、Biotecon公司、天根生化科技有限公司、Invitrogen公司、Qiagen公司、TaKaRa公司)、CTAB法以及改良SDS-CTAB法提取玉米蛋白粉中的DNA。通過(guò)對(duì)玉米內(nèi)源基因進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè),發(fā)現(xiàn)改良SDS-CTAB法提取的玉米蛋白粉DNA質(zhì)量明顯優(yōu)于其他方法,改良SDS-CTAB法內(nèi)源基因zSSⅡb的Ct值為28.14,較CTAB法提高了27%。研究建立的改良SDS-CTAB法在國(guó)內(nèi)外尚屬首次應(yīng)用于飼料轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品中,并對(duì)7批次實(shí)驗(yàn)室送檢樣品進(jìn)行轉(zhuǎn)基因成分檢測(cè),成功檢出2批次陽(yáng)性樣品。

摘要： 為建立一種滿足車廂復(fù)雜現(xiàn)場(chǎng)條件的臭蟲(chóng)微量DNA有效提取方法,本研究采用離心柱法、磁珠法及其改良方法提取臭蟲(chóng)總DNA,利用紫外分光光度法和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA提取質(zhì)量.結(jié)果顯示離心柱法和磁珠法均可有效提取臭蟲(chóng)基因組DNA,磁珠法提取的DNA純度顯著高于離心柱法.改良后的提取方法,裂解時(shí)間30min與2h的DNA提取濃度和純度間沒(méi)有顯著差異;上清中的DNA占總提取量的70％以上;添加沉降劑可顯著提高電泳條帶亮度.綜上所述,改良的臭蟲(chóng)基因組DNA提取方法簡(jiǎn)單快速,能夠滿足后續(xù)臭蟲(chóng)PCR檢測(cè)的需要.

摘要： 為建立一種滿足車廂復(fù)雜現(xiàn)場(chǎng)條件的臭蟲(chóng)微量DNA有效提取方法,本研究采用離心柱法、磁珠法及其改良方法提取臭蟲(chóng)總DNA,利用紫外分光光度法和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA提取質(zhì)量.結(jié)果顯示離心柱法和磁珠法均可有效提取臭蟲(chóng)基因組DNA,磁珠法提取的DNA純度顯著高于離心柱法.改良后的提取方法,裂解時(shí)間30min與2h的DNA提取濃度和純度間沒(méi)有顯著差異;上清中的DNA占總提取量的70％以上;添加沉降劑可顯著提高電泳條帶亮度.綜上所述,改良的臭蟲(chóng)基因組DNA提取方法簡(jiǎn)單快速,能夠滿足后續(xù)臭蟲(chóng)PCR檢測(cè)的需要.

摘要： 為建立一種滿足車廂復(fù)雜現(xiàn)場(chǎng)條件的臭蟲(chóng)微量DNA有效提取方法,本研究采用離心柱法、磁珠法及其改良方法提取臭蟲(chóng)總DNA,利用紫外分光光度法和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA提取質(zhì)量.結(jié)果顯示離心柱法和磁珠法均可有效提取臭蟲(chóng)基因組DNA,磁珠法提取的DNA純度顯著高于離心柱法.改良后的提取方法,裂解時(shí)間30min與2h的DNA提取濃度和純度間沒(méi)有顯著差異;上清中的DNA占總提取量的70％以上;添加沉降劑可顯著提高電泳條帶亮度.綜上所述,改良的臭蟲(chóng)基因組DNA提取方法簡(jiǎn)單快速,能夠滿足后續(xù)臭蟲(chóng)PCR檢測(cè)的需要.

摘要： 為建立一種滿足車廂復(fù)雜現(xiàn)場(chǎng)條件的臭蟲(chóng)微量DNA有效提取方法,本研究采用離心柱法、磁珠法及其改良方法提取臭蟲(chóng)總DNA,利用紫外分光光度法和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA提取質(zhì)量.結(jié)果顯示離心柱法和磁珠法均可有效提取臭蟲(chóng)基因組DNA,磁珠法提取的DNA純度顯著高于離心柱法.改良后的提取方法,裂解時(shí)間30min與2h的DNA提取濃度和純度間沒(méi)有顯著差異;上清中的DNA占總提取量的70％以上;添加沉降劑可顯著提高電泳條帶亮度.綜上所述,改良的臭蟲(chóng)基因組DNA提取方法簡(jiǎn)單快速,能夠滿足后續(xù)臭蟲(chóng)PCR檢測(cè)的需要.

摘要： 此案中，浸泡后煙蒂的成功檢出為本案?jìng)善铺峁┝朔较?。面?duì)送檢時(shí)已經(jīng)浸泡2小時(shí)以上的煙蒂，采用純化的方式提高檢驗(yàn)成功率成為關(guān)鍵，因此在提取時(shí)采取了疑難檢材提取和純化的方法。同樣，為得到更多的擴(kuò)增產(chǎn)物，擴(kuò)增中，增加了DNA樣本加入量。無(wú)論是提取或是擴(kuò)增均未按照常規(guī)煙蒂在檢驗(yàn)時(shí)所采取的提取和擴(kuò)增模式。面對(duì)此類特殊檢材，實(shí)驗(yàn)人員應(yīng)在實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前對(duì)于送檢的檢材有客觀的判斷，制定合理的檢驗(yàn)方案，最大限度提高檢驗(yàn)成功率。

摘要： 此案中，浸泡后煙蒂的成功檢出為本案?jìng)善铺峁┝朔较?。面?duì)送檢時(shí)已經(jīng)浸泡2小時(shí)以上的煙蒂，采用純化的方式提高檢驗(yàn)成功率成為關(guān)鍵，因此在提取時(shí)采取了疑難檢材提取和純化的方法。同樣，為得到更多的擴(kuò)增產(chǎn)物，擴(kuò)增中，增加了DNA樣本加入量。無(wú)論是提取或是擴(kuò)增均未按照常規(guī)煙蒂在檢驗(yàn)時(shí)所采取的提取和擴(kuò)增模式。面對(duì)此類特殊檢材，實(shí)驗(yàn)人員應(yīng)在實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前對(duì)于送檢的檢材有客觀的判斷，制定合理的檢驗(yàn)方案，最大限度提高檢驗(yàn)成功率。

摘要： 此案中，浸泡后煙蒂的成功檢出為本案?jìng)善铺峁┝朔较颉Ｃ鎸?duì)送檢時(shí)已經(jīng)浸泡2小時(shí)以上的煙蒂，采用純化的方式提高檢驗(yàn)成功率成為關(guān)鍵，因此在提取時(shí)采取了疑難檢材提取和純化的方法。同樣，為得到更多的擴(kuò)增產(chǎn)物，擴(kuò)增中，增加了DNA樣本加入量。無(wú)論是提取或是擴(kuò)增均未按照常規(guī)煙蒂在檢驗(yàn)時(shí)所采取的提取和擴(kuò)增模式。面對(duì)此類特殊檢材，實(shí)驗(yàn)人員應(yīng)在實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前對(duì)于送檢的檢材有客觀的判斷，制定合理的檢驗(yàn)方案，最大限度提高檢驗(yàn)成功率。

摘要： 此案中，浸泡后煙蒂的成功檢出為本案?jìng)善铺峁┝朔较?。面?duì)送檢時(shí)已經(jīng)浸泡2小時(shí)以上的煙蒂，采用純化的方式提高檢驗(yàn)成功率成為關(guān)鍵，因此在提取時(shí)采取了疑難檢材提取和純化的方法。同樣，為得到更多的擴(kuò)增產(chǎn)物，擴(kuò)增中，增加了DNA樣本加入量。無(wú)論是提取或是擴(kuò)增均未按照常規(guī)煙蒂在檢驗(yàn)時(shí)所采取的提取和擴(kuò)增模式。面對(duì)此類特殊檢材，實(shí)驗(yàn)人員應(yīng)在實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前對(duì)于送檢的檢材有客觀的判斷，制定合理的檢驗(yàn)方案，最大限度提高檢驗(yàn)成功率。

摘要： 昆蟲(chóng)基因組DNA提取是對(duì)昆蟲(chóng)在分子水平上進(jìn)行研究的關(guān)鍵,提取的DNA的純度、濃度及完整性是進(jìn)行基因工程各項(xiàng)研究所必須的條件.本研究以不同變態(tài)時(shí)期及組織的柞蠶為樣品進(jìn)行DNA的提取,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行對(duì)比分析.結(jié)果發(fā)現(xiàn),利用蟻蠶為樣品提取過(guò)程簡(jiǎn)單,DNA質(zhì)量好,得率高.利用血細(xì)胞為樣品操作簡(jiǎn)單、時(shí)間短、效率高,但DNA得率不高.

摘要： 昆蟲(chóng)基因組DNA提取是對(duì)昆蟲(chóng)在分子水平上進(jìn)行研究的關(guān)鍵,提取的DNA的純度、濃度及完整性是進(jìn)行基因工程各項(xiàng)研究所必須的條件.本研究以不同變態(tài)時(shí)期及組織的柞蠶為樣品進(jìn)行DNA的提取,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行對(duì)比分析.結(jié)果發(fā)現(xiàn),利用蟻蠶為樣品提取過(guò)程簡(jiǎn)單,DNA質(zhì)量好,得率高.利用血細(xì)胞為樣品操作簡(jiǎn)單、時(shí)間短、效率高,但DNA得率不高.

摘要： 本發(fā)明涉及一種DNA提取試劑、DNA的提取方法及DNA提取試劑盒。該DNA提取試劑包括裂解液及除雜劑，裂解液包括終濃度為1M～5M的異硫氰酸胍、終濃度為0.01M～0.2M的Tris?HCl和最終質(zhì)量體積百分?jǐn)?shù)為1％～10％的N?月桂酰肌氨酸；除雜劑包括交聯(lián)聚乙烯基吡咯烷酮及聚乙烯基吡咯烷酮中的至少一種。上述DNA提取試劑中的裂解液與除雜劑能夠相互配合，能夠減少DNA在提取制備過(guò)程中的降解，且提高DNA的純度，使用上述DNA提取試劑制備得到的DNA能夠滿足宏基因組測(cè)序的要求。

摘要： 本發(fā)明公開(kāi)了一種用于游離循環(huán)腫瘤DNA提取的增強(qiáng)劑、提取外周血中游離循環(huán)腫瘤DNA的試劑盒及方法。其中，該增強(qiáng)劑包括：1μg/μL～5μg/μL Carrier RNA、1μg/μL～5μg/μL多聚腺苷酸、1μg/μL～5μg/μL糖原、0～5μg/μL線性丙烯酰胺、1μg/μL～5μg/μL酵母tRNA、2μg/μL～10μg/μL大馬哈魚(yú)精子DNA和/或鯡魚(yú)精子DNA和水。本發(fā)明的用于游離循環(huán)腫瘤DNA(ctDNA)提取的增強(qiáng)劑，可與常規(guī)的裂解結(jié)合液、洗滌緩沖液、洗脫液等結(jié)合使用，通過(guò)特異性的結(jié)合ctDNA并沉降下來(lái)，顯著地提高了ctDNA的提取效率和提取產(chǎn)量。

摘要： 本發(fā)明公開(kāi)了一種快速、高質(zhì)量、通用型基因組DNA提取試劑盒及DNA提取方法。本發(fā)明用于提取DNA的試劑盒包括溶液A：1?6%的CTAB、1?6M的鹽酸胍、50?250mM的pH為8.0的Tris?HCl、8?50mM的pH為8.0的EDTA、0.2?3.0M的NaCl、0.4?3％的Triton X?100;溶液B：10?100mM的NaCl、3?50mM的pH為8.0的Tris?HCl、70%?80%的乙醇；溶液C：TE緩沖液，pH8.0。本發(fā)明可以高效提取得到不同類型樣品的純度高且完整性好的DNA。

摘要： 本發(fā)明涉及一種DNA提取試劑、DNA的提取方法及DNA提取試劑盒。該DNA提取試劑包括裂解液及除雜劑，裂解液包括終濃度為1M～5M的異硫氰酸胍、終濃度為0.01M～0.2M的Tris?HCl和最終質(zhì)量體積百分?jǐn)?shù)為1％～10％的N?月桂酰肌氨酸；除雜劑包括交聯(lián)聚乙烯基吡咯烷酮及聚乙烯基吡咯烷酮中的至少一種。上述DNA提取試劑中的裂解液與除雜劑能夠相互配合，能夠減少DNA在提取制備過(guò)程中的降解，且提高DNA的純度，使用上述DNA提取試劑制備得到的DNA能夠滿足宏基因組測(cè)序的要求。

摘要： 本發(fā)明提供了瓊脂糖在DNA提取中的應(yīng)用,在DNA提取過(guò)程中加入瓊脂糖。進(jìn)一步的，本發(fā)明還提供了相應(yīng)的DNA提取試劑盒及DNA提取方法，DNA提取試劑盒包括盒體及盒體中單獨(dú)存放的試劑，所述試劑包括瓊脂糖。所述DNA提取方法，包括在DNA提取過(guò)程中加入瓊脂糖的步驟。本發(fā)明通過(guò)實(shí)驗(yàn)證明了在DNA提取過(guò)程中加入瓊脂糖，可提高微量DNA在提取過(guò)程中的回收率，獲得良好PCR擴(kuò)增效果及完整的STR分型結(jié)果，本發(fā)明提供的DNA提取方法相比于常規(guī)提取方法，如Chelex-100法、磁珠法，具有更高的DNA回收率。

摘要： 本發(fā)明涉及一種快速高效提取煙草基因組DNA的方法，具體為：使用以下提取液對(duì)DNA進(jìn)行提取，提取液的各組分的濃度為0.1MTris、1M KCl、10mM EDTANa

摘要： 本發(fā)明提供了一種磁珠法提取質(zhì)粒DNA的試劑盒，包括質(zhì)粒提取試劑和羥基磁珠，質(zhì)粒提取試劑包括溶液I、溶液II、溶液III、磁珠結(jié)合液、漂洗液和洗脫液。溶液I、溶液II、溶液III的混合比例為1：1：1.4。還提供了利用上述磁珠法提取質(zhì)粒DNA的試劑盒來(lái)提取高純度質(zhì)粒DNA的方法。本發(fā)明所述的磁珠法提取質(zhì)粒DNA的試劑盒及提取質(zhì)粒DNA的方法，縮短了質(zhì)粒提取時(shí)間，提取的質(zhì)粒能夠滿足后續(xù)PCR、酶切、轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)染等實(shí)驗(yàn)的大量需求，減少了時(shí)間和經(jīng)濟(jì)成本。

摘要： 本發(fā)明公開(kāi)了一種低共熔溶劑在DNA提取中的應(yīng)用，所述低共熔溶劑為氯化膽堿體系低共熔溶劑，尤其是氯化膽堿與氫鍵供體摩爾比為1:1～5，所述氫鍵供體包括六氟異丙醇；本發(fā)明還公開(kāi)了一種低共熔試劑提取DNA的方法，采用所述的氯化膽堿體系低共熔溶劑提取全血中DNA，本方法對(duì)DNA提取回收率可達(dá)95％以上，且提取的DNA濃度在50μg/mL以上，本方法一次性提取獲得DNA樣本量大，而且高效、安全環(huán)保，能夠滿足大批量實(shí)驗(yàn)需求，另外，本發(fā)明還公開(kāi)了一種DNA提取試劑盒，所述DNA提取試劑盒，包括本發(fā)明所述的氯化膽堿體系低共熔溶劑。

摘要： 本發(fā)明公開(kāi)了一種提取DNA的試劑盒，包括裂解液、萃取棒、清洗液、洗脫液；裂解液用于裂解生物樣品；萃取棒用于萃取生物樣品中的DNA，該萃取棒包括棒體、固定在棒體外壁上的復(fù)合膜，該復(fù)合膜包括硝酸纖維膜和粘附在硝酸纖維膜上的吸附材料M?UIO?66?NH

摘要： 本發(fā)明公開(kāi)了一種快速、高質(zhì)量、通用型基因組DNA提取試劑盒及DNA提取方法。本發(fā)明用于提取DNA的試劑盒包括溶液A：1?6%的CTAB、1?6M的鹽酸胍、50?250mM的pH為8.0的Tris?HCl、8?50mM的pH為8.0的EDTA、0.2?3.0M的NaCl、0.4?3％的Triton X?100;溶液B：10?100mM的NaCl、3?50mM的pH為8.0的Tris?HCl、70%?80%的乙醇；溶液C：TE緩沖液，pH8.0。本發(fā)明可以高效提取得到不同類型樣品的純度高且完整性好的DNA。